第一章 生物大分子制备和分析常用技术第一节 概论一、预处理和细胞的分离（一）选择材料及预处理（二）细胞的分离二、细胞的破碎及细胞器的分离第二节 电泳技术一、基本原理二、影响电泳的因素三、醋酸纤维素薄膜电泳四、琼脂糖凝胶电泳（一）核酸分子大小与琼脂糖浓度的关系（二）核酸构型与琼脂糖凝胶电泳分离的关系（三）琼脂糖凝胶电泳基本方法五、常规聚丙烯酰胺凝胶电泳（一）聚丙烯酰胺凝胶聚合原理及相关特性（二）聚丙烯酰胺凝胶电泳原理（三）操作方法六、SDS?聚丙烯酰胺凝胶电泳原理七、聚丙烯酰胺梯度凝胶电泳八、聚丙烯酰胺凝胶等电聚焦电泳（一）等电聚焦的原理（二）pH梯度的形成九、双向凝胶电泳十、染色方法（一）蛋白质染色（二）核酸染色第三节 色谱技术一、色谱技术的概念二、色谱法的分类（一）按两相所处的状态分类（二）按色谱的分离机制分类三、常用的色谱方法（一）凝胶色谱（二）离子交换色谱（三）亲和色谱（四）高效液相色谱（五）毛细管电泳第四节 离心技术一、离心理论（一）离心分离的原理（二）相对离心力和离心时间（三）离心机的分类二、离心分离的种类（一）差速离心法（二）密度梯度离心法三、离心操作注意事项第五节 分光光度技术一、基本原理——朗伯?比尔定律二、分光光度技术的应用（一）定量分析（二）定性分析第二章 蛋白质、核酸的提取与分离第一节 蛋白质的提取、分离纯化及定量一、蛋白质（包括酶）的提取（一）水溶液提取法（二）有机溶剂提取法二、蛋白质的分离纯化（一）根据蛋白质溶解度不同进行分离的方法（二）利用色谱技术对蛋白质进行分离纯化（三）利用电泳技术对蛋白质进行纯化分离（四）利用超速离心分离制备蛋白质（五）膜分离技术在蛋白质分离纯化中的应用（六）重组蛋白的分离纯化（七）分离制备蛋白质的一个实例三、蛋白质的定量第二节 DNA的提取与分离一、质粒DNA的提取与分离（一）质粒提取的一般步骤（二）质粒DNA的小量制备（三）质粒DNA的大量制备二、染色体DNA的提取与分离(一)从培养细胞中提取DNA(二)从组织中提取DNA(三)从大量血样的白细胞中分离高分子量DNA(四)从小量血样的白细胞中分离高分子量DNA(五)高分子量DNA的小量快速制备第三节 RNA的提取与分离一、组织培养细胞胞质RNA的制备二、胍盐法制备总RNA(一)氯化铯纯化培养细胞的RNA(二)氯化铯纯化组织中的RNA(三)一步法从培养细胞或组织中分离RNA三、细菌RNA的制备(一)从革兰阴性菌中分离高质量RNA(二)革兰阳性菌RNA的分离(三)革兰阴性菌RNA的快速分离四、poly(A)+RNA的制备第四节 核酸的定量测定一、紫外分光光度法测定DNA和RNA的含量二、电泳比较法（溴化乙锭荧光法）三、定磷法测定核酸四、二苯胺法测定DNA含量五、地衣酚法测定RNA含量第三章 PCR技术……第四章 分子杂交与印迹技术第五章 分子克隆技术第六章 外源基因转移技术第七章 蛋白质表达技术第一节 外源基因在原核细胞中的表达第八章 分子标记技术第九章 分子改造技术第十章 测序及人工合成技术第十一章 基因组学技术第十二章 蛋白质组学技术第十三章 生物芯片技术第十四章 生物信息学技术附录参考文献
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你好 请问可以把电子版的书分享给我吗 有偿 急求啊
大
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生物学顶尖的当然是science，Nature，cell, 然后PNAS, genomes research，molecular biologyTrends系列
我在微生物前沿这本刊上看到过这篇文献“漆酶生物转化酚类化合物的研究进展”，你多看看学习下吧
你去（微生物前沿）刊物上找下吧
碳源是微生物生长一类营养物，是含碳化合物。常用的碳源有糖类、油脂、有机酸及有机酸酯和小分子醇等，如葡萄糖、甘油等都可以作为碳源，不同的微生物可利用不同的碳源。碳源在制作微生物培养基或细胞培养基时有重要的作用，为微生物或细胞的正常生长，分裂提供物质基础。所谓唯一碳源就是说，培养基中只有一种碳源物质，就是说加了葡萄糖就不要加甘油或其他可以作为碳源的物质。单次实验只考察一种碳源是否对微生物的生长和代谢起到作用，这样你就能确定适合该微生物的最适合碳源。
大
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看你是写概论还是具体的学术论文了，概论可以找找相关的前景，背景，现状等资料，学术论文就找找相关论题的分子生物学文章，具体格式就不发了，网上随便找找类似的论文就可以有格式来模仿了。
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后基因组时代的分子生物学技术2000年6月26日，人类基因组计划(human genome project，HGP)与Celera公司的负责人共同宣布了人类基因组工作框架图的完成，2b01年2月分别将自己测定的框架图发表在"Nature"和"Science"向大众公布。同时，模式生物基因组计划(model organism genome project，MOGP)已完成了大肠埃希氏菌(Escherichia coli)、流感嗜血杆菌(Haemophilus influenzae)、酿酒酵母(Saccharomyces cerevisiae)、秀丽线虫(Caenorhabditis elegans)、果蝇(Drosophila melanogaster)、拟南芥(Arabidopsis thaliana)的基因组全序列测定和图谱的绘制等工作。另外小鼠(Musmusculs)等哺乳动物基因组计划也取得了很大进展。所有这些，标志着基因组学研究已由静态碱基测序的结构基因组学(structural genomics)转入到和态生物学功能注释的功能基因组学(functional genomics)即后基因组时代(post-genomeera)。前者代表基因组研究分析的早期阶段，以建立生物体高分辨遗传、物理和转录图谱为主；后者代表基因组研究分析进入了一个新阶段，即利用结构基因组学提供的信息，系统研究基因的功能，它以高通量、大规模试验方法及统计与计算机分析为特征。后基因组时代的分子生物学技术主要包括功能基因表达概况、功能蛋白质组学、比较基因组学和生物信息学等技术。1 功能基因表达概况研究 基因表达概况是比较不同组织和不同发育阶段，正常状态和疾病状态，以及体外培养的细胞中基因表达模式的差异。基因表达分子模式研究，一是制作mRNAs的表达谱，二是研究蛋白质表达谱即蛋白质组学(这proteomics)。在转录水平研究基因表达的经典方法有RT-PCR、RNase保护试验、RNA印迹杂交等方法，但这些方法只能一次做一个或几个基因。目前，随着各种生物基因组计划的深入研究，必须借助新的技术如微点阵(micrioarray)和基因表达系列分析(serial analysis Of gene expression，SAGE)等技术进行大规模、高通量的基因表达分析。1．1 差别显示 1992年真核生物mRNA的差别显示(differential display，DD)技术建立，它可以快速而可靠地同时比较两个以上的细胞群体或组织的基因表达差异。经DNase处理的高纯度的总RNA用T11XY引物(X＝A／C／G；Y＝A／C／G／T)进行反转录，其产物作为下一步PCR的模板，PCR底物使用标记的核苷酸，使用与反转录相同的T11XY引物和随机引物10mer各一套。这样就可以扩增出一个亚群的总cDNA，然后总cDNA进行凝胶电泳放射自显影，通过cDNA带谱的比较就可鉴定出差异扩增的cDNAs。1．2 代表性差异分析 代表性差异分析(representational difference analysis，RDA)先是用于鉴别2个复杂基因组的差异而建立的，以后结合减法杂交和PCR技术的优势用于分析基因差别表达。首先，用从2个不同的群体获得的mRNA，分别称为tester和driver(对照)，进行反转录，用多位点限制性酶消化后，在cDNA的两端连上linker，然后进行PCR~产生不同基因池的最初代表。tester和driver的cDNAs的linker经消化后，再在它的两端连上一个新的linker，尔后把tester和driver的cDNAs以1：100的比例混合，过量的drivercDNAs是为了促进在2个cDNA间的杂交，然后通过其两端的引发位点进行PCR，只扩增tester cDNA产生的同源双链。RDA的主要优势是，通过稀有表达的tester序列的一个富集步骤，只特异性扩增存在于一个cDNA池中的片段。1．3 表达序列标签 一个细胞或生物的基因表达模式决定了其基本的生物学性状。在微生物中编码区域的鉴定可以通过对整个基因组测序而实现。对于真核生物存在着基因的非邻接组织结构，这就需要表达序列标签(expressed sequence tags，ESTs)。ESTs的最重要的特征之一是能够用于鉴定由基因组得来的编码区。重叠的ESTs序列可以装配为一个个重叠框(contig)，从而可以确定一个基因的整个mRNA序列。利用产生的数据库和ESTs，对区分表达和未表达的基因组区域将会有很大的帮助。